Срок хранения стерильных изделий на стерильном столе

014. Срок хранения изделий на стерильном столе:

+ а) 6 часов

б) 8 часов

в) 12 часов

г) 24 часа

015. После выписки каждого больного кровать, прикроватную тумбочку, подставку для подкладного судна двукратно протирают:

+ а) 1% раствором хлорамина

б) 70% спиртом

в) 2% мыльно-содовым раствором

г) все вышеперечисленное верно

016. Кровь для исследования методом ИФА на ВИЧ может храниться в холодильнике не более:

а) 6 часов

б) 12 часов

+ в) 24 часов

г) ничего не верно

017. Фенолфталеиновая проба проводится для обнаружения остатков:

+а) моющих средств

б) крови

в) жировых загрязнений

г) лекарственных препаратов

018. К растворам, концентрация которых губительно действует на вирусы неотносится:

а) 3% раствор Хлорамина

б) 3% раствор Вапусана

+ в) 1 % раствор Хлорамина

г) 0,75 % раствор Лизоформина

019. При выявлении у пациента чесотки, больного изолируют в бокс или отдельную палату, в которой проводят текущую дезинфекцию с применением:

а) 1% раствора карболовой кислоты,

+ б) 2% мыльно-содового горячего раствора

в) 3% раствора перекиси водорода

г) 0,5% раствора моющего средства

020. Дезинфицирующие средства должны храниться:

а) в шкафу общего списка лекарств

б) в шкафу для наружных лекарственных средств

в) в шкафу для «пахучих» лекарственных средств

+ г) отдельно от лекарств

>021. Запас инсулина необходимо хранить:

а) в морозильной камере

+ б) в холодильнике на дверце

в) в шкафу

г) на столе

022. Условия, требующие хранения лекарственных препаратов в защищенном от воздействия повышенной температуры месте должны подразумевать температурный режим в следующих пределах:

+ а) комнатную температуру (18-20 гр. С)

б) комнатную температуру (20-24 гр. С)

в) холодную (низкую) температуру (4-6 гр.С)

г) не имеет значения

023. Сбор острого инструментария (иглы,перья,скальпели однократного применения и др), прошедшего дезинфекцию,осуществляется:

а) совместно с другими видами отходов в мягкую упаковку

+ б) отдельно от других видов отходов в одноразовую твердую упаковку

в) совместно с другими видами отходов в многоразовую емкость

г) все вышеперечисленное не верно

024. Вскрытую ампулу с туберкулином можно использовать в течение:

+ а) 2-х часов

б) 1 часа

в) 24 часов

г) 3-х дней

025. Азопирамовая проба проводится для обнаружения остатков:

а) моющих средств

+ б) крови

в) жировых загрязнений

г) микроорганизмов

Памятка мед. сестре по правилам работы со стерильным материалом

Памятка мед. сестре по правилам работы со стерильным материалом.

При неправильной транспортировке, хранении, использовании стерильные материалы и инструменты легко подвергаются повторному инфицированию. Чтобы этого избежать, необходимо выполнять следующие правила работы со стерильным материалом.

Сроки хранения стерильных материалов в стерилизационных коробках (биксах)- 3 суток. Если эта стерилизационная коробка вскрывалась, то эти материалы допускается использовать в течение суток после вскрытия (после чего боковые отверстия в стерилизационной коробке должны быть открыты).

Мед. работник, вскрывая стерилизационную коробку со стерильными изделиями, обязан при этом ставить дату и час ее вскрытия.

Изделия считаются простерилизованными и приготовленными для использования, если цветной индикатор стерилизации изменил свой цвет.

При отсутствии индикатора, или отсутствия изменения его окраски, использовать материал не разрешается.

Для работы материалы из стерилизационной коробки извлекаются по мере необходимости стерильным, специально выделенным инструментом (пинцетом), с соблюдением правил асептики. Лотки, банки (если в них в процессе лечебно-диагностической манипуляции перекладывают стерильные материалы) должны быть стерильными. Изделия, переложенные в лотки, используются немедленно и хранению не подлежат. Для взятия стерильных изделий из стерилизационных коробок, со стерильного стола и проведения с ними манипуляций используется пинцет (корнцанг), простерилизованный паровым или воздушным методом. Ежедневно перед началом работы пинцет необходимо заменять. Для сохранения стерильности в течение рабочего дня, он хранится под стерильной пеленкой или погружается в дез. раствор. Дез. раствор меняется каждые 6 часов. Посуду, в которую наливается дез. раствор, стерилизуют паровым или воздушным методом.

Манипуляции со стерильными изделиями значительно упрощаются, если для каждой медицинской процедуры используется специальный набор инструментов. При этом необходимые для процедуры изделия (инструменты, материалы) стерилизуются в бумажной салфетке, которая затем используется как стерильная поверхность.

Доставка стерильных материалов из автоклавной осуществляется в контейнерах или мешках из плотной ткани. Материалы для операционных, перевязочных и других служб, где предъявляются высокие требования к асептике, освобождаются от транспортной упаковки непосредственно у входа в такие помещения. Доставку стерильных материалов на рабочее место (в отделение, кабинет) осуществляет специально проинструктированный персонал, который несет за это ответственность. В процессе доставки категорически запрещается оставлять стерильные материалы без присмотра. Случайно вскрытые стерилизационные коробки, упавшие или поврежденные упаковки использовать запрещается и они возвращаются для повторной стерилизации.

На рабочих местах запасы стерильных материалов необходимо хранить в специально выделенных шкафах, тумбочках или на столах (материалы в последнем случае накрывают простыней).

I. Подготовка бикса к стерилизации состоит в следующем:

1. Проверяют детали на герметичность:

а). плотность закрытия крышки

б). легкость передвижения пояса и точность совпадения отверстий корпуса с

отверстиями пояса

в). прочность фиксации металлического пояса к корпусу зажимным

устройством

2. Протирают бикс изнутри и снаружи 0,5 % раствором нашатырного спирта

3. При использовании стерилизационных коробок без фильтров (марки КСК) перед укладкой в них стерилизуемых объектов коробку изнутри выстилают одним слоем хлопчатобумажной ткани. При использовании коробок с фильтрами этого можно не делать.

4. Укладывают в бикс материал (белье, перевязочный материал и т. д.).

5. Размещают в биксе индикаторы контроля стерильности материала.

II. Подготовка к стерилизации перевязочного материала, белья заключается в следующем:

— халаты — вначале складывают продольно пополам дважды, рукавами внутрь, а затем, начиная от подола к воротнику, скатывают в рулон;

— простыни — узкий край загибают на ширину 50 см, затем простыню складывают вдоль вчетверо и не туго скатывают, начиная от не загнутого конца;

— полотенца — складывают вчетверо;

— тампоны — подворачивают внутрь на 1-2 см один из коротких слоев марли, затем подворачивают внутрь с некоторым заходом друг на друга более длинные края с повторным складыванием их пополам в продольном и поперечном направлениях;

— салфетки — подворачивают края больших сторон, чтобы они заходили слегка друг на друга, затем свободные концы меньших сторон заворачивают внутрь до соприкосновения друг с другом и складывают салфетку пополам.

Для удобства стерилизации и учета расхода каждый вид салфеток

(тампонов) связывают по 10 штук полоской марли.

— ватные шарики – укладываются в бязевые мешочки по 20-25 штук.

— ножницы, зажимы и подобные инструменты укладываются в раскрытом

виде.

Хирургическое белье, перевязочные материалы укладывают в стерилизационные коробки перпендикулярно крышке стерилизационной коробки («на ребро»), т. е. параллельно движению пара.

Рекомендуемая плотность загрузки стерилизационных коробок хирургическим бельем, перевязочным материалом и инструментами представлена в таблице.

Стерилизуемый объект	Единица измерения	Тип коробки
КСК-3 КФ-3	КСК-6 КФ-6	КСК-9 КФ-9	КСК-12 КФ-12	КСК-18 КФ-18	КСПФ-12	КСПФ-16
Бинт	г
Вата	г
Полотенце	шт
Халат	шт
Простыня	шт
Бахилы	пара
Хирургич. шапочки	шт

Эффективность стерилизации зависит от плотности укладки. Количество стерилизуемого материала должно соответствовать таблице. При смешанной загрузке используют следующую зависимость: 1халат = 1простыне = 3 полотенцам = 3 парам бахил = 14 хирургическим шапочкам.

Резиновые перчатки перед стерилизацией внутри и снаружи пересыпают тальком для предохранения их от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток завертывают отдельно в марлю или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или другую упаковку.

III. Стерилизация.

Стерилизация обеспечивает гибель в стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов. Стерилизацию проводят различными методами: паровым, воздушным, химическим. Выбор метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемого изделия.

Паровым методом стерилизуют:

— хирургические инструменты

— стеклянную посуду

— шприцы с надписью 200°С

— белье, перевязочный материал

— изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т. д.), латекса, отдельных полимерных материалов.

Стерилизацию изделий из металла, стекла, резины и текстильных материалов проводят или в стерилизационных коробках (биксах), или в двойном слое хлопчатобумажной ткани (бязь, полотно) или в растительном пергаменте (марки А и Б по ГОСТу 1342-74).

Стерилизационные коробки промышленность выпускает трех образцов: КСК — без фильтра и КСПФ и КФ — с фильтром.

Стерилизационные коробки с неисправными замками, оторванными петлями, с отслужившими срок эксплуатации фильтрами и поврежденными уплотнительными прокладками и т. п. использовать запрещается.

Биксы принимаются чистые, без старых индикаторов, с четкой маркировкой (отделения или кабинета и наименования находящегося в биксе материала для выбора требуемого режима стерилизации).

Режимы стерилизации паровым методом.

1. t 132º±2° экспозиция 20+ 2 мин для изделий из коррозионностойкого металла, стекла, изделий из текстильных материалов.

2.t 120°±2° экспозиция 45+3 мин для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов (полиэтилен высокой плотности).

Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках без фильтров или с фильтрами; в двойной мягкой упаковке из бязи, в пергаменте, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге двухслойной крепированной.

Срок хранения изделий, простерилизованных в стерилизационных коробках в двойной мягкой упаковке из бязи, равен 3 суткам.

Воздушным методом стерилизуют:

— хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты

— детали приборов и аппаратов, изготовленные из коррозионнонестойких металлов

— шприцы с отметкой 200°С

— инъекционные иглы

— изделия из силиконовой резины

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух. Стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия обязательно высушивают. Стерилизацию проводят в упаковке или без упаковки. В качестве упаковочного материала используется бумага мешочная влагопрочная (используется не более 2-х раз), бумага крепированная ( используется 3 раза). Шприцы стерилизуют в разобранном виде. Металлические инструменты без упаковки располагают так, чтобы они не касались друг друга.

Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию.

Стерилизуемые изделия, равномерно распределяя, укладывают горизонтально поперек пазов кассет (полок); не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Объемные изделия следует класть на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха. При загрузке необходимо следить за тем, чтобы стерилизуемые изделия не попадали в зону вращения крыльчатки. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре в стерилизационной камере 40-50°С.

Режим стерилизации воздушным методом:

1. t 180° + 2° экспозиция 60 + 5мин

2. t 160° + 2° экспозиция 150 мин

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в упаковке — 3 суток, без упаковки — в течение одной рабочей смены при нахождении на » стерильном столе».

Стерилизация растворами химических средств.

Данный метод является вспомогательным и применяется в тех случаях, когда особенности материалов, из которых изготовлены изделия, не позволяют использовать другие методы стерилизации. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства ко всем стерилизуемым поверхностям изделия.

При стерилизации растворами химических средств используются стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъемные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором.

Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими.

По окончании стерилизации изделия необходимо промыть стерильной жидкостью (вода; 0,9 % раствор натрия хлорида), строго соблюдая правила асептики, нарушение которых может привести к вторичному обсеменению простерилизованных изделий микроорганизмами.

Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости, налитой в стерильные емкости.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Режимы стерилизации представлены в таблице.

Контроль параметров режима работы воздушных стерилизаторов.

1. Физический метод контроля

а). контроль температурного параметра режимов работы в течение цикла стерилизации проводят путем наблюдения за показаниями приборов, установленных на стерилизаторе (термометр, индикаторные устройства на панели аппарата).

б) распределение температур внутри загруженной стерилизационной камеры проводят с использованием термометра ртутного стеклянного максимального с диапазоном измерения от 0° до 200°С

в). хронометраж стерилизации проводят с помощью секундомера или часов наручных.

2. Химический метод контроля

Осуществляется с помощью индикаторов. Индикаторы плавления (тиомочевина, бензойная кислота и пр.) из практики исключены. Для оперативного контроля используются только индикаторы интегрированного действия фирмы «Винар», изменяющие окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полоски индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Число контрольных точек зависит от объема камеры. При объеме камеры воздушного стерилизатора до 80 литров включительно закладывается 5 индикаторов: точка 1 располагается в центре камеры, точки 2 и 5 – перед загрузочной дверью справа и слева; точки 3 и 4 в глубине камеры у задней стенки тоже справа и слева. Каждая контрольная точка должна быть расположена на расстоянии не ближе 5 см от стенок камеры. Если окраска индикатора после стерилизации в какой — либо контрольной точке светлее эталона, это указывает на несоблюдение параметров режима стерилизации. В этом случае вся партия изделий считается непростерилизованной и подлежит повторной стерилизации. При повторении неудовлетворительных результатов контроля эксплуатацию стерилизатора прекращают и проверяют его техническую исправность, соблюдение правил загрузки стерилизатора и правильность установки параметров. Стерилизатор разрешают использовать после устранения причин его неудовлетворительной работы и получения положительных результатов контроля.

3.Бактериологический метод контроля

Предназначен для контроля эффективности работы стерилизаторов на основании выявления гибели спор тест-культур, осуществляется с помощью биотестов.

IY. Правила накрытия стерильного стола.

Стерильный стол накрывается стерильной простыней в один слой так, чтобы она свисала на 15-20 см ниже поверхности стола. Вторая простыня складывается вдвое и укладывается поверх первой. После выкладывания инструментов стол накрывается простыней (сложенной в 2 слоя), которая должна закрывать все предметы и плотно скрепляться зажимами с нижней простыней. Стерильный стол накрывается на 6 часов.

Все манипуляции, связанные с подготовкой стерильного стола, проводят в стерильных перчатках, маске, халате. Предметы со стерильного стола мед. сестра должна брать корнцангом или длинным пинцетом, который вместе с емкостью для его хранения ежедневно стерилизуется. Во время работы пинцет для стерильных изделий хранят в дез. растворе. Не использованные в течение смены материалы и инструменты со стерильного стола направляют на повторную стерилизацию. Хранение на стерильном столе шприцев с набранным лекарством запрещается.

Материал и инструменты, простерилизованные в 2-х слойной упаковке из бязи или в биксах хранится не более 3-х суток после начала стерилизации ( на упаковке и биксе указывается дата и время стерилизации). При вскрытии бикса его срок хранения не более суток (на биксе указывается дата и время вскрытия).

Используемая литература:

1. Методические указания по стерилизации в паровых стерилизаторах перевязочного материала, хирургического белья, хирургических инструментов, резиновых перчаток, стеклянной посуды и шприцев № 28-4/6 от 12.08.80.

2. ОСТ » Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения». Методы, средства и режимы.

3. Методические рекомендации по повышению надежности стерилизационных мероприятий в ЛПУ по системе «Чистый инструмент» № 11-16/03-03 от 31.01.94г

4. Методические рекомендации МЗРФ №11-8/03-54 от 11.06.93 по контролю стерилизации с использованием индикаторов стерилизации ИС-132°, ИС-180° «Винар».

5. «Больничная гигиена» С-Петербург,2000г.

Дезинфекция и стерилизация стоматологического инструментария

Стерилизация — уничтожение всех форм патогенных и непатогенных микроорганизмов. Стерилизации подвергаются изделия медицинского назначения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кровью, с диагностическими и лекарственными препаратами, вводимыми парентерально, а также инструментарий, который при контакте со слизистыми оболочками может вызвать их повреждение.

Процесс стерилизации проводится поэтапно и включает в себя:

— предварительную дезинфекцию;

— предстерилизационную очистку;

— собственно стерилизацию;

— контроль качества стерилизации.

Перед предстерилизационной очисткой и стерилизацией дезинфекции подвергаются изделия медицинского назначения, использованные при:

— гнойных операциях;

— оперативных манипуляциях:

— инфекционных больных;

— пациентов, являющихся носителями патогенных микроорганизмов и HBs-Ag, перенесших гепатит с неуточненным диагнозом;

— пациентов, относящихся к группам риска заболевания СПИДом, гепатитом;

— изделия, использованные для введения живых вакцин;

— все изделия при наличии эпидемиологических показаний в регионе.

Дезинфекция — удаление или уничтожение живых возбудителей инфекционных болезней в (на) абиотических объектах окружающей среды.

Дезинфекция медицинских изделий проводится на месте их использования (в отделениях, кабинетах) с применением физических и химических агентов. Наиболее надежной принято считать физическую дезинфекцию.

Обеззараживание физическими методами представлено в трех вариантах.

1. Кипячение в дистиллированной воде в течение 30 минут или в 2,0% растворе питьевой соды (15 минут) при полном погружении предмета.

2. Обработка водяным насыщенным паром под избыточным давлением (0,5 кгс/см2) при температуре 110°С, время выдержки— 20 минут, осуществляется в паровых стерилизаторах или дезинфекционных камерах.

3. Дезинфекция сухим горячим воздухом при температуре 120°С с экспозицией 45 минут, для чего используются воздушные стерилизаторы (сухожаровые шкафы).

Химическая дезинфекция

Применяются различные химические вещества и их сочетания (дезинфектанты). Основные дезинфицирующие агенты и режимы химической дезинфекции представлены в табл. 2, 3.

Примечание: режим дезинфекции дан в трех вариантах:

— при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериальной и вирусной этиологии;

— при туберкулезе;

— при вирусных гепатитах.

Температура дезинфицирующих растворов не менее 18 °С.

Предстерилизационная обработка стоматологического инструментария

Предстерилизационная очистка предназначена для удаления с изделий белковых, механических и лекарственных загрязнений с целью усиления эффекта последующей (см. табл. в разделе «Пропедевтика хирургической стоматологии»).

Очистке подвергается инструментарий после его использования и предварительной дезинфекции. Ее осуществляют ручным или механизированным способом в моющих растворах. Рецептуры моющих растворов представлены в табл. 4.

Для уменьшения коррозии металлических предметов, обрабатываемых в растворах с перекисью водорода, рекомендуется применять ингибитор коррозии — 0,14% р-р олеата натрия.

Процесс очистки включает в себя:

— ополаскивание проточной водой по 30 с на предмет;

— замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в течение 15 минут, температура раствора 50°С (если используется средство «Биолот» температура 40″С);

— мойка каждого изделия в моющем растворе щеткой по 30 с каждый предмет;

— ополаскивание в проточной воде 3—5 мин;

— ополаскивание в дистиллированной воде 30 с;

— сушка горячим воздухом при 85 «С до полного исчезновения влаги.

Пользоваться моющим раствором можно до загрязнения, о чем свидетельствует появление его розовой окраски. Раствор, содержащий «Биолот», применяют однократно. Температуру растворов в процессе очистки не поддерживают. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз.

Инструменты с коррозийными пятнами и наличием оксидной пленки очищают химическим способом (не более двух раз в квартал). Для этого используется специальный состав. Уксусная кислота — 5,0 г (по 100% концентрации), хлорид натрия-1,0 г, вода дистиллированная — до 100,0 см3. В растворе изделия замачивают, а затем промывают проточной водой. Экспозиция для скальпелей из нержавеющей стали — 2 минуты, для инструментов с оксидной пленкой — 3 минуты, при сильном коррозийном поражении — 6 минут с механической очисткой ершом или ватномарлевым тампоном.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки определяют путем постановки химических реакций на наличие:

— крови и белковых загрязнений (азопирамовая и амидопириновая пробы);

— остаточных количеств щелочи моющих растворов (фенолфталеиновая проба);

— жира (проба с Суданом III).

Контролю качества очистки подлежит 1% изделий каждого наименования, обработанных в смену.

Азопирамовая проба

Приготовление реактива. 100 г амидопирина и 1,0—1,5 г солянокислого анилина смешивают в сухой посуде, затем заливают 95% этиловым спиртом до 1,0 литра. Смесь тщательно перемешивают. Реактив готов после полного растворения компонентов. Срок хранения раствора в холодильнике в плотно закрытой емкости 2 месяца, при комнатной температуре — не более 1 месяца.

Перед постановкой пробы готовят рабочий раствор. Смешивают равные объемные количества вышеуказанного реактива (азопирам) и 3% раствора перекиси водорода. Проба должна быть поставлена в течение 30-40 минут. В противном случае возможно спонтанное окрашивание реактива.

Амидопириновая проба

Для постановки пробы необходимы: 5% раствор амидопирина (на 95% этиловом спирте), 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода. Последние два реактива готовят на дистиллированной воде. Рабочий раствор получают путем смешивания равных количеств этих растворов.

Фенолфталеиновая проба

Применяют 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Раствор можно использовать в течение месяца, при условии его хранения в холодильнике.

Техника постановки азопирамовой, амидолириновой, фенолфталеиновой проб

Наружные поверхности изделий протирают рабочим раствором реактива или наносят несколько капель. Для контроля очистки шприцев в них вносят 3-4 капли реагента и несколько раз продвигают поршнем. Затем реактив через 30-60 секунд вытесняют на белую марлевую салфетку.

При положительной азопирамовой пробе немедленно или не позднее 1 минуты появляется фиолетовое, затем розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Положительная амидопириновая проба сопровождается сине-фиолетовым окрашиванием реактива. Окрашивание реактивов, наступившее позже 1 минуты, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба считается положительной при появлении розового цвета реактива.

Проба с Суданом III

Растворяют 0,2 г измельченной краски судан III и 0,2 г метиленового синего в 70 мл подогретого до 60°С 95% этилового спирта. Затем добавляют 10 мл 20—25% раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды. Приготовленный раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в холодильнике до 6 месяцев.

Реактивом смачивают поверхность изделия, которое могло быть загрязнено жирами. Через 10 секунд краситель обильно смывают водой. Появление пятен, окрашенных в желтый цвет, свидетельствует о жировом загрязнении.

Стерилизация

Стерилизацию проводят паровым, воздушным и химическим методами. Выбор метода зависит от характеристик изделий, подвергающихся стерилизации.

Паровой метод

Действующий агент — водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Стерилизация осуществляется в паровыx стерилизаторах. Применяется один из трех режимов (табл. 5):

Рекомендуется для изделий из коррозиестойкого металла, стекла, изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов.

Все изделия, простерилизованные в стерилизационных коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи или в пергаментной бумаге и прочих разрешенных материалах, считаются стерильными в течение 72 часов. В случаях стерилизации в коробках с фильтрами этот срок увеличивается до 20 суток. По истечении указанных сроков предметы подвергаются повторной стерилизации.

Воздушный метод

Действующий агент — сухой горячий воздух. Используются воздушные стерилизаторы. Стерилизация осуществляется в одном из двух режимов:

1. Первый: температура — 180°С, время выдержки — 60 мин.

2. Второй: температура — 160°С, время выдержки — 150 мин.

Метод рекомендуется для изделии из металла, стекла и силиконовой резины. Изделия, простерилизованные в разрешенном упаковочном материале, могут храниться, в течение 20 суток. Если стерилизация данным методом производилась без упаковки, то стерильный материал должен быть использован сразу после стерилизации.

Химический метод

Используются растворы химических веществ и специальные газы.

Перекись водорода — 6% раствор. Применяется для стерилизации предметов из полимерных материалов, резин, стекла, коррозиестойких металлов. Изделие погружается в раствор на 360 минут при температуре стерилизационного раствора 18°С. Экспозиция может укорачиваться до 180 минут, если раствор изначально подогреть до 50°С (температура в процессе стерилизации не поддерживается). Готовый раствор перекиси водорода можно хранить в закрытой емкости в темном месте 7 суток. По истечении этого срока раствор применяется после химического переконтроля на содержание активно действующего вещества.

Дезоксон-1 (1% раствор уксусной кислоты) применяется по той же технологии. Температура раствора должна быть не ниже 18°С, время выдержки — 45 минут. Раствор дезоксона-1 используется только в течение одних суток.

Пары 40% раствора формальдегида в этиловом, спирте. Стерилизацию проводят в микроанаэростатах или в дополнительно оборудованной скороварке «Минутка». Предметы упаковывают двумя слоями полиэтиленовой пленки толщиной 0,06-02 мм, пергамента и другими разрешенными упаковочными мате- риалами. Режим стерилизации: температура в камере 80°С, количество рабочего раствора — 375,0 мг/дм’!. Время выдержки для изделий из полимерных материалов — 180 минут, для изделий из металла и стекла — 120 минут. Простерилизованный материал в упаковке из полиэтиленовой пленки может храниться 5 лет. В иной упаковке стерильность сохраняется 20 суток.

Предметы из пластмасс и резин, контактирующих с кровью, подвергаются предварительной дегазации (48 часов при комнатной температуре).

Смесь ОБ (окись этилена с бромистым метилом 1:2,5 по весу) и окись этилена — газообразные вещества. Применяемое оборудование— микроанаэростат, специально оборудованная скороварка «Минутка». Стерилизуют предметы в упаковке из двух слоев (двойные пакеты из рекомендованных материалов). Стерилизация проводится при температуре 18°С, 35°С и 55°С. Срок хранения изделий после стерилизации в полиэтиленовой пленке — 5 лет, в иной упаковке до 20 суток.

Простерилизованные предметы применяются после обязательной дегазации (газы токсичны для человека и животных; в вентилируемом помещении. Точные сроки дегазации указаны в ТУ (технические условия) для конкретных изделий.

Наибольшие трудности возникают при дезинфекции наконечников. Согласно инструкции Главного СЭУ Министерства здравоохранения РФ дезинфекция стоматологических наконечников проводится путем тщательного двукратного протирания наружных частей и канала для бора стерильным ватно-марлевым тампоном, смоченным 1 % р-ром хлорамина, 2 % р-ром лизоформина. Интервал между протираниями 15 минут. Для стерилизации наконечников используют масляные стерилизаторы.

Контроль качества стерилизации

Контроль качества стерилизации осуществляется физическим, химическими и бактериологическими методами. Физический и химический методы используются в оперативном контроле технологического цикла стерилизации, т. е. результаты учитываются в процессе стерилизации или сразу после ее окончания.

Физический метод

Метод предполагает измерение температуры, давления и времени.

Контроль температурного режима проводится с помощью максимальных термометров. Диапазон измерения от 0 до 150°С для паровых стерилизаторов, от 0 до 200°С для воздушных стерилизаторов. Упакованные термометры размещают в контрольные точки. По окончании цикла стерилизации регистрируются показания термометров, которые сопоставляются с регламентированной температурой.

Хронометраж стерилизации проводят с помощью механического секундомера или наручных механических часов.

Давление в паровом стерилизаторе измеряют мановакуум метром. Диапазон измерения 1-5 кгс/см2.

Обнаружение неудовлетворительных результатов показывает на возможные нарушения: режима стерилизации, правильности загрузки или исправности аппарата.

Химический метод

Химический контроль проводят с помощью химических тестов и термических индикаторов. Используются химические вещества, иногда в смеси с органическим красителем, изменяющие свое агрегатное состояние и цвет при определенной температуре.

Упакованные химические тесты нумеруют и размещают в паровые и воздушные стерилизаторы. Обычно индикаторные соединения запаивают в стеклянные трубочки. При равномерном расплавлении и изменении цвета теста результат считается удовлетворительным.

Для контроля работы паровых стерилизаторов применяются вещества, температура плавления которых соответствует температурному режиму работы данного аппарата:

— Амидопирин (белый кристаллический порошок или кристаллы без запаха), интервал температуры плавления 104— 107°С.

— Антипирин (белый кристаллический порошок или бесцветные кристаллы без запаха), 108—111°С.

— Резорцин (белый или со слабым желтоватым оттенком кристаллический порошок со слабым запахом), 105—110°.

— Бензойная кислота (бесцветные игольчатые кристаллы или белый кристаллический порошок), 114—120°С.

— Д(+)-Манноза (бесцветные кристаллы в виде ромбических призм), 127—131 °С.

— Никотинамид (белый мелкокристаллический порошок со слабым запахом), 125—131 °С.

Контроль температурного режима работы воздушных стерилизаторов осуществляется тестами с другими химическими веществами:

— Левомицетин (белый или с желтовато-зеленоватым оттенком кристаллический порошок), интервал температуры плавления 141- 146°С.

— Винная кислота (бесцветные кристаллы), 168—169°С.

— Гидрохинон (бесцветные или светло-серые серебристые кристаллы), 164—170°С.

— Тиомочевина (блестящие кристаллы), 165—171°С.

Обнаружение не оплавленного теста указывает на несоблюдение температурных параметров режима стерилизации. Стерилизацию повторяют с закладкой новых химических тестов. При повторном неудовлетворительном результате прекращают использовать стерилизатор. Проводят тщательную проверку его состояния с контролем измерительной аппаратуры.

Бактериологический метод

Метод предназначен для контроля работы стерилизаторов с помощью биотестов. Биотесты представляют собой споры бактериальных культур, помещенных в стеклянные трубки или чашечки из алюминиевой фольги.

Используют тест-культуры ВКМ В-718 и штамм С. Биотесты готовят бактериологические лаборатории в соответствии с официальной методикой. В случаях неудовлетворительного результата (рост культур) проводится анализ параметров стерилизационного цикла.

Дополнительно может применяться контроль на стерильность смывов с простерилизованного инструментария.

Наиболее частые причины негативных результатов контроля стерилизации:

— неисправность аппаратуры и контрольно-измерительных приборов;

— неполное удаление воздуха из рабочей камеры парового стерилизатора;

— перегрузка и неправильная загрузка стерилизационной камеры;

— несоблюдение параметров стерилизации;

— использование нерегламентированного упаковочного материала;

— нарушение режима вентиляции парового стерилизатора;

— использование в химической стерилизации веществ после длительного хранения без контроля на содержание активно действующего начала.