Сроки сохранения стерильности материала в зависимости от упаковки.

Паровой метод.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в герметичной упаковке в пергаменте, бумаге мешочной пропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром- 20 суток, а в любой негерметичной упаковке и стерилизационной коробке без фильтра-3 суток.

Тест на внимательность Только 5% пользователей набирают 100 баллов. Сколько баллов наберешь ты?

Узнать

Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной и бумаги крепированой — до 2-х раз , крафт- бумаги- до 3-х раз(с учетом целостности).

Воздушный метод.

Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на » стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

Срок сохранения изделий, простерилизованных и герметично упакованных в бумагу упаковочную высокопрочную, бумагу крепированную- 20 суток. Кратность использования бумаги мешочной влагопрочной, бумаги крепированной — до 2-х раз, бумаги упаковочной высокопрочной- до 3-х раз.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в крафт-бумаге-3 суток, кратность использования ее — до 3-х раз.

Стерилизация растворами химических веществ.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3-х суток.

Газовый метод.

Изделия, простерилизованные смесью ОБ или окисью этилена, применяют после их выдержки в вентилируемом помещении в течение:

-1 суток — для изделий из стекла, металла

-5-13 суток — для изделий из полимерных металлов, имеющих кратковременный контакт (до 30 минут).

-14 суток — для всех изделий , имеющих длительный контакт(свыше 30 минут) со слизистыми оболочками, тканями, кровью.

-21 сутки — для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт(свыше 30 минут), используемых для детей.

Бикс – это специальный стерилизационный контейнер, используемый в медицине, который представляет собой металлический цилиндр, с цельным дном и крышкой, в которых есть специальные отверстия для пара. В биксах стерилизуют медицинские материалы и инструменты в паровых стерилизаторах, а затем хранят их в операционных и перевязочных.

Сроки хранения стерильных материалов и инструментов в биксе

Срок хранения инструментов в биксах зависит от разновидности контейнеров, которые подразделяются на:

  • Коробки стерилизационные круглые (КСК);
  • Коробки стерилизационные круглые с фильтрами (КСКФ, КФ);
  • Коробки стерилизационные прямоугольные с фильтром (КСПФ). Используются крайне редко.

Кроме разновидности стерилизованного контейнера, на срок хранения инструментов в нём влияет ещё и то, была ли вскрыта коробка или нет. Разберём все варианты более подробно.

Без фильтра

Такой вид стерильных контейнеров оснащён цельным дном и крышкой. По его периметру (по средине или ближе к нижнему краю) расположено множество отверстий, через которые проникает пар в процессе стерилизации инструментов. Когда процесс стерилизации окончен, отверстия закрываются специальным металлическим пояском, который фиксируется замком.

Срок хранения стерильных материалов в этом виде коробки:

  • В закрытом — не более 3 дней;
  • После вскрытия – не более 6 часов.

Эта разновидность биксов (без фильтров) почти не используется, так как сохраняет стерильность в течение слишком малого срока.

С фильтром

Эти контейнеры отличаются от предыдущей разновидности цельным корпусом, в котором отсутствуют отверстия. Вместо стенок корпуса, отверстия, через которые проникает пар, находятся в крышке и днище коробки. На них устанавливаются специальные фильтры, которые изготавливаются из следующих материалов:

  • Фильтродиагональ;
  • Нетканый материал;
  • Отбеленная бязь;
  • Миткаль;
  • Мадаполам.

Фильтры удерживаются внутри контейнера при помощи металлических зажимов. Использовать такой фильтр можно до 60 стерилизаций. Если он выгорит, его заменяют двухслойной бязью, после чего бикс продолжает эксплуатироваться в режиме «без фильтра», и тогда срок хранения стерильных материалов внутри него сокращается до 3 дней, как и в обычном контейнере.

Срок хранения стерильных материалов в этом виде коробки:

  • В закрытом — до 20 дней;
  • После вскрытия – до 6 часов.

Также, внутри самого бокса могут дополнительно использоваться:

  • Двухслойная мягкая упаковка из крепированной для медицинского использования бумаги;
  • Двухслойная мягкая упаковка;
  • Герметичный пакет из крепированной бумаги.

Производители биксов

Среди производителей стерильных коробок есть как российские, так и белорусские производители. Среди них самые популярные эти:

  • «Ока-Медик»;
  • «МЕДФИЛЬТР»;
  • «Башмедика»;
  • «БазисMED»;
  • «ДеалМед»;
  • «Гродненский завод торгового машиностроения».

Виды медицинских изделий для стерилизации и хранения в биксах

В биксах хранят инструменты и материалы медицинского назначения:

  • Материалы для перевязки;
  • Шприцы термостойкие;
  • Операционное бельё;
  • Хирургические материалы;
  • Прочие медицинские инструменты;
  • Изделия из металла, стекла, силиконовой резины и резины.

Правила и требования к стерилизованному биксу по СанПиН в части его хранения и транспортировки

Согласно СанПин, прежде, чем упаковать в стерильную коробку какой-либо материал или прибор, бокс требуется правильно подготовить:

  • Для начала нужно проверить исправность контейнера;
  • Далее он протирается изнутри спиртово-марлевым тампоном. Вся внутренняя поверхность контейнера застилается тканевой простынёй. После этого на дно коробки кладётся стеритест;
  • Перед тем, как положить инструмент или материал в бикс, их нужно завернуть в специальную упаковку;
  • Материал или приборы необходимо укладывать так, чтобы между ними оставалось свободное пространство, чтобы при стерилизации пар мог свободно проникать в глубину предмета;
  • Инструменты и материал следует класть так, чтобы они занимали немного места, и взять их было как можно легче. Предметы должны занимать не больше 2/3 от всего объёма контейнера;
  • На дно, посередине и сверху заполненного контейнера нужно положить индикатор стерилизации, который потребуется для контроля стерилизации непосредственно в медицинском учреждении;
  • После заполнения контейнера, материал покрывают стеритестом, а сверху кладут пинцет;
  • На готовые биксы ставится маркировка. Поверх контейнера закрепляется бирка, с указанием отделения, даты укладки, наименованием уложенных внутрь предметов, их количества, а также указывается фамилия ответственного лица;
  • На боковую поверхность стерильной коробки приклеиваются полоски стериконт, чтобы контролировать режим стерилизации.

На этом подготовка биксов закончена. Далее осуществляется доставку контейнеров в ЦСО. К ней СанПин также предъявляет определённые требования:

  • Доставка должна осуществляться во влагостойком мешке, который подвергся стерилизации;
  • Мешок обязательно должен иметь маркировку.

Возвращать пустые коробки обратно необходимо также в стерильном мешке. Во время хранения контейнеров непосредственно в медицинском учреждении, медработники обязаны следить за сроком их хранения. Делать это необходиом как до вскрытия, так и после. Если срок хранения стерильных коробок закончился, их тут же должны отправить на повторную стерилизацию.

Правила и места хранения биксов в операционном блоке, процедурном кабинете, аптеке и т.д.

  • Перед использованием инструментов и прочих приборов из стерильной коробки, необходимо проверить индикатор стерилизации, находящиеся внутри контейнера. Всю информацию нужно занести в специальный журнал;
  • Если индикатор говорит о том, что срок хранения стерильных инструментов и приборов подошёл к концу, использовать их нельзя;
  • Если стерилизационный контейнер был вскрыт, находящиеся в ней стерильные приборы нужно использовать в течение 6 часов (1 смены);
  • Инструменты из стерильного контейнера извлекаются только по мере необходимости, во время работы. Делать это нужно при помощи специальным стерильным инструментом.

Биксы были разработаны и изготовлены в середине XX века, на Тюменском заводе медицинских изделий. Эти стерильные контейнеры продолжают используются в медицинских учреждениях и на сегодняшний день, потому что биксы удобны как в процессе стерилизации, так и во время хранения различных медицинских приборов.

Упаковочный материал для стерилизации

Способы контроля качества предстерилизационной очистки (пробы на кровь, моющие средства, жир, хлорсодержащие средства).

Чтобы повысить эффективность предстерилизационной обработки и стерилизации в ЦСО проводится цветная реакция на следы хлорсодержащих дезинфицирующих средств, свидетельствующих о том, что в отделении, откуда инструменты были доставлены, пер­вичная дезинфекция действительно проводилась. Отрицательная реакция свидетельствует о том, что дезинфекция в отделении не проводилась. В этом случае инструменты возвра­щают в отделение для первичной дезинфекции. При дезинфекции химическими сред­ствами, не содержащими хлор, эта реакция не проводится.

Ватным тампоном, смоченным реактивом протирают поверхность контрольного инструмента. При наличие синего окрашивания – первичная дезинфекция в отделении проводилась, при отсутствии окрашивания — первичная дезинфекция не проводилась.

Контроль качества предстерилизационной обработки.

Качество предстерилизационной обработки контролируют путем проб:

1) на наличие крови — с помощью азопирамовой и амидопириновой;

2) масляных лекарственных загрязнений на шприцах и других изделиях — проба с Суданом III;

3) щелочных компо­нентов моющих средств — фенолфталеиновой пробой.

Азопирамовая проба. Готовят 1-1,5-процентный раствор солянокислого анилина в 95-процентном этиловом спирте. Он может храниться в плотно закрытом флаконе при 4’С (в холодильнике) 2 месяца, а в темноте при комнатной температуре (18-23″С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выде­ления осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед пробой готовят раствор: смешивают в равных количе­ствах азопирам и 3-процентную перекись водорода. Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 ч, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание. При температуре 25°С раствор розовеет быстрее, поэтому его ис­пользуют в течение 30-40 мин.

Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор при ярком свете, повышенной температуре (вблизи нагре­вательных приборов и т. п.).

Проведение пробы: смочить ватный тампон реактивом и протереть инст­румент или 2-3 капли реактива пипет­кой нанести на из­делие.

Оценка результата: тампон или капля реактива, нанесенная на марлевую салфетку, дают фиолетовое окрашива­ние немедленно или в течение 1 мин. Окрашивание, наступившее позже, не учитывается. При азопирамовой пробе фиолетовое окрашивание в течение нескольких секунд переходит в розово-сиреневое или буроватое. Проба с азопирамом по чувствительности не уступает отмененной бензидиновой пробе и в 10 раз превосходит амидопириновую.

Амидопириновая проба. Готовят спиртовой 5-процентный раствор амидопирина в 95-процентном этиловом спирте, который может храниться во флаконах с притер­той пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30-процентный раствор уксусной кислоты и 3-процентной перекиси водорода готовят на дистиллированной воде. Смешивают равные количества 5-процентного спиртового раствора амидопирина, 30-процентной уксусной кислоты и 3-процентной перекиси водорода перед употреблением.

Проведение пробы: Чистым шприцем набирают реактив (не имеющим сле­дов коррозии) выдавливают 3-4 кап­ли через иглу на марлевую салфетку или в катетеры и дру­гие полые изделия набирают чистым шприцем или пи­петкой реактив и сливают на марле­вую салфетку.

Оценка результата: тампон или капля реактива, нанесенная на марлевую салфетку, дают фиолетовое окрашива­ние немедленно или в течение 1 мин. Окрашивание, наступившее позже, не учитывается.

Проба с Суданом III. В 70 мл нагретого до 60°С (на водяной бане) 95-процентного этилового спирта растворяют по 0,2 г измельченной краски Судана III и метиленового синего. Затем добавляют 10 мл раствора аммиака 20-25-процентного и 20 мл дистил­лированной воды. Данный раствор хранят в плотно закрытом флаконе (в холодильнике) 6 месяцев.

Проведение пробы: Смачивание поверхностей инструментов 3-5 мл реактива или введение внутрь шприца и других полых изделий.

Оценка результата: на положительный результате пробы указывает наличие на инструменте желтых пятен и подтёков.

Фенолфталеиновая проба. Готовят спиртовой раствор 1-процентного фенолфта­леина, который хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

Проведение пробы: Протирание (введение внутрь) инстру­мента, шприца, иглы и т. д. ватным тампоном со спиртовым раствором 1 -про­центного фенолфталеина.

Оценка результата: При наличии следов моющего средства появляется розовое окрашивание.

При положительной пробе на кровь, жировое загрязнение или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной очистке (до получения отрицательных результатов). Контролю подвергают 1% каждого наименования изде­лий, обработанных за сутки, а в ЦСО — за 1 смену.

1. Упаковочные материалы для стерилизации

Медицинские упаковочные материалы для стерилизации предназначены для размещения изделий медицинского назначения перед стерилизацией и последующего сохранения стерильности этих изделий после стерилизации до использования по назначению. Указанные упаковочные материалы предназначены для однократного применения.

К медицинским стерилизационным упаковочным материалам предъявляют следующие требования:

— стерилизующий агент должен свободно проникнуть внутрь упаковки с изделиями и простерилизовать ее содержимое соответствующим методом;

— полностью исключается возможность проникновения микроорганизмов в упаковку с изделиями после проведенной стерилизации;

— должны выдерживать воздействие соответствующего стерилизующего агента, исключая возможность повреждения им упаковки, сохраняя внешний вид (кроме цвета индикаторов, нанесенных на упаковку);

— швы после стерилизации должны оставаться герметичными;

— полностью исключается возможность проникновения внутрь упаковки с изделиями нежелательных субстанций с поверхности упаковки (клея, химического индикатора) во время стерилизации;

— упаковка позволяет легко либо запечатать, либо заклеить содержимое;

-позволяют безопасно манипулировать упакованными изделиями после стерилизации и извлекать содержимое упаковки без риска его вторичной контаминации микроорганизмами после стерилизации.

Правила упаковывания изделий для последующей стерилизации:

— перед упаковыванием изделий упаковку осматривают, проверяя её целостность (не допускается использование поврежденных упаковок);

— для предотвращения повреждения упаковок колющими (например иглы) и режущими (скальпели хирургические, ножницы и прочее) инструментами используют различные защитные приемы:

1) упаковывают изделия последовательно в две упаковки;

2) обертывают рабочие части инструментов чистыми марлевыми или бумажными салфетками.

Комбинированные упаковки, не имеющие клеевого слоя, запечатывают с помощью термосварочных аппаратов, в том числе аппаратов для запаивания медицинских материалов, предназначенных для стерилизации. Рекомендуемая рабочая температура термосваривания комбинированных упаковок составляет 180–220°С. Создаваемая ширина термошва должна быть не менее 8 мм, а окрашенная полимерная пленка в этой области приобретает более темный оттенок, позволяя по равномерности окраски визуально контролировать целостность термошва.

Упаковочные материалы для стерилизации представлены несколькими видами упаковок:
1. Рулоны для стерилизации

2. Пакеты для стерилизации комбинированные

3. Крафт пакеты для стерилизации

4. Коробка стерилизационная КСК ( бикс)

Коробка стерилизационная КСК круглой формы используется для размещения перевязочных материалов, термостойких шприцов, операционного белья и других предметов, применяемых в медицине. Размещение в КСК медицинских материалов производится с целью проведения процедуры их стерилизации в специальных паровых устройствах (автоклав). После чего в стерилизационной коробке материалы могут храниться в стерильном состоянии от 3 (без фильтра) до 20 дней (с фильтром). Также в биксе можно транспортировать материалы к месту, где необходимо их использование. Коробки изготовлены из нержавеющей стали.

6. Контроль качества стерилизации: физический, бактериологический, химический (индикаторы стерильности).

Контроль позволяет улучшить качество стерилизации в УЗ. Он предусматрива­ет определение эффективности и параметров стерилизации. Надежность воздушной стерилизации зависит от конструкции стерилизатора, его исправности, схемы и объема загрузки, используемой защитной упаковки, применяе­мых методов оперативного и периодического контроля, подготовки персонала, обсу­живающего стерилизатор.

Различают визуальный, физический, химический, бактериологический виды контроля.

Визуальный контроль. Проверяют правильность использования упаковочных материалов, уровень загрузки упаковок и стерилизационных камер, обоснованность выбранного метода стерилизации.

Физический контроль. Физический метод контроля предназначен для оперативного контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов (температура стерилизации, давление, время стерилизационной выдержки). Результаты контроля позволяют оперативно выявить неисправность аппарата и контрольно-измерительных приборов и ориентировочно оценить правильность загрузки стерилизатора в каждом конкретном случае. Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют с помощью средств измерения температуры (термометр, термометр максимальный), давления (мановакуумметр) и времени (секундомер, часы). Параметры режима работы стерилизатора следует проверять в течение цикла стерилизации, проводимого в соответствии с паспортом на аппарат. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля в процессе стерилизационного цикла и после его окончания загрузку считают непростерилизованной. Аппарат прекращают использовать, анализируют правильность осуществления требуемого режима стерилизации, правильность загрузки и исправность аппарата. При обнаружении неисправности специально выделенное лицо, ответственное за проведение стерилизации медицинского инструментария, вызывает представителя ПО «Медтехника» для ее устранения. Стерилизатор разрешают использовать после устранения причин неудовлетворительной работы стерилизатора и получения удовлетворительных результатов контроля.

Химический контроль. Химический метод контроля предназначен для оперативного контроля одного или в совокупности нескольких параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляют с помощью химических тестов и термохимических индикаторов. Химический тест представляет запаянную с обоих концов стеклянную трубку, заполненную смесью химического соединения с органическим красителем или только химическим соединением (веществом), изменяющим свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенной для него температуры плавления. Термохимические индикаторы предназначены для оперативного контроля одного (температура) или совокупности нескольких параметров режимов работы паровых (температура, наличие остаточного воздуха, присутствие водяного насыщенного пара под избыточным давлением) и воздушных стерилизаторов (температура и время стерилизации). Термохимический индикатор представляет собой полоску бумаги, на которую нанесена термоиндикаторная краска. Определение параметров, достигнутых в процессе стерилизации, основано на изменении цвета термоиндикаторной краски при достижении»температуры перехода», строго определенной для каждой краски.

На сегодняшний день необходимо использовать тест-индикаторы 4 поколения, которые позволяют контролировать все параметры стерилизации (давление, температура, время).

Различают тест-индикаторы для контроля вне упаковки и внутри упаковки.

Следует помнить, что внутренние и внешние тест-индикаторы должны использоваться строго по назначению. Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковки на 3 уровнях при однородной укладке (при смешанной закладке – в каждый вид стерилизуемого материала помещают дополнительный тест). Внутренние тест-индикаторы позволяют контролировать параметры стерилизации внутри упаковки. Внешние тест-индикаторы контролируют параметры стерилизации внутри стерилизационной камеры и размещаются в определенных точках камеры.

Тест-индикаторы оцениваются непосредственно после окончания стерилизации (внешние тест-индикаторы) и после вскрытия упаковки (внутренние тест-индикаторы).

Оцениваются все тест-индикаторы. При наличии одного тест-индикатора не соответствующего эталону материал считается не стерильным, и использоваться не может.

Правила закладки тест-индикаторов в стерилизационные упаковки:

— в однородных укладках тест-индикаторы закладываются на три уровня (вниз-середина-верх);

— в комбинированных укладках тест-индикаторы закладывают на три уровня (низ-середина-верх) и дополнительно в середину каждого вида материала;

— в мягкие укладки малого объема допустимо закладывать одни тест-индикатор в середину укладки.

Тест-индикаторы хранятся все время работы укладки.

Ежеквартально проводят контроль работы стерилизационной паровой камеры с помощью стандартного модуля – параллепипед из 17 простыней размером: 300-300-900мм – «куклы». «Кукла» — 9 внутренних тест-индикаторов, которые закладывают по середине 17 простыней (между 8 и 9 простынями). Простыни заворачивают в двухслойную простыню и проводят полный цикл стерилизации в автоклаве.

Оперативный контроль паровой стерилизации проводят химическими индика­торами интегрированного действия (термовременными).

Индикаторы плавления (бензойная кислота и др.), которые все еще используются в некоторых УЗ, не являются индикаторами стерильности, поскольку регистрируют только температуру, но не учитывают стерилизационную выдержку (время стерилизации). Индикаторы фирмы «Винар» ИС-120 и ИС-132, также, как и в воз­душном стерилизаторе, изменяют окраску до учета эталона только при воздействии, на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки.

При каждом цикле полоски индикатора закладываются в контрольные точки сте рилизатора. Если окраска индикатора в какой-нибудь точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Контроль воздушной стерилизации химическими термовременными индикаторами. Для оперативного контроля ранее рекомендовали многочисленные химические вещества, точка плавления которых соответствует температуре стерилиза­ции (левомецитин, винная, янтарная кислота). Но на сегодняшний день всем ясно, что они не могут считаться надежными индикаторами, поскольку не дают представления о времени воздействия горячего воздуха на изделие. Такой контроль носит ориентировочный характер и не гарантирует достижения стерильности в процессе стерилизации.

Надежность оперативного контроля существенно повышается при использова­нии индикаторов интегрированного действия, в частности, НП фирмы «Винар» ИС-160 и ИС-180, изменяющая окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всей стерилизационной выдержки. Полос­ки индикатора закладываются в контрольные точки стерилизатора при каждом цикле стерилизации. Если окраска индикатора после стерилизации в какой-либо точке светлее эталона, все изделия считаются нестерильными.

Бактериологический контроль. Бактериологический метод контроля предназначен для контроля эффективности работы стерилизаторов на основании выявления гибели спор тест-культур.

С целью оценки эффективности стерилизации проводят бактериологические исследования с помощью биотестов и исследования смывов на стерильность. Биотест представляет собой дозированное количество тест-культуры на носителе (или в нем), помещенном в упаковку. Упаковка предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. Биотесты для контроля работы паровых стерилизаторов представляют собой флаконы из трубки стеклянной для лекарственных средств, ФИ/1-5 НС 1 ТУ 64-0709-10-88 (инсулиновые флаконы) или чашечки из алюминиевой фольги, содержащие высушенные споры тест-культуры Bacillus stearothermophilus ВКМ В-718. Биотесты для контроля работы воздушных стерилизаторов представляют собой упакованные носители. В качестве носителей используют небольшой флакон, содержащий споры B.Licheniformis. Кроме того могут быть применены в качестве носителя диски из фильтровальной бумаги (ГОСТ 12026-76), содержащие высушенные споры тест-культуры Bacillus licheniformis штамм G.

Биотесты готовят бактериологические лаборатории дезинфекционных станций или санитарно-эпидемиологических станций в соответствии с методикой. Бактериологическая лаборатория выдает биотесты в пакетах из упаковочной бумаги (ОСТ 42-21-2-85), запечатанных в полиэтиленовые пакеты, которые служат для доставки биотестов. Упакованные биотесты нумеруют и размещают в контрольные точки паровых и воздушных стерилизаторов.

Смывы на стерильность забирают с инструментов непосредственно после отработки режима стерилизации и с инструментов, подготовленных к работе (со стерильного стола или лотка). Забор смывов осуществляет медсестра непосредственно участвующая в работе со стерильным материалом. Кратность исследований определяется: для операционного блока, отделений реанимации исследования на качество стерилизации проводится 1 раз в 10 дней, для остальных режимных кабинетов – 1 раз в месяц.

Контроль стерилизации с помощью биотестов проводится в рамках производственного контроля – ежеквартально. После ремонта стерилизующей аппаратуры контроль биотестами обязателен.

ВИДЫ УПАКОВОК ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ МЕДИЦИНСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ

Таблица 10

№ п/п Наименование (вид) упаковочного материала Режим стерилизации Кратность использования Срок хранения
1. Двойная мягкая из бязи 1320 С 1200 С В простом биксе – 3 суток В биксе с фильтром – 20 суток
2. Пергамент 1320 С 1200 С 2 раза 20 суток
3. Бумага мешочная непропитанная 1320 С 1200 С 2 раза 20 суток
4. Бумага мешочная высокопрочная 1320 С 1200 С 1600 С 1800 С 3 раза 20 суток
5. Бумага крепированная 1320 С 1200 С 1600 С 1800 С 2 раза 20 суток
6. Стерилизационные упаковочные материалы фирм «Медикал» и «Рексон» 1320 С 1200 С 1600 С 1800 С Смотреть в методических рекомендациях

· При паровом, воздушном, газовом и плазменном методах изделия стерилизуют в упакованном виде, используя бумажные, комбинированные и пластиковые стерилизационные упаковочные материалы, а также пергамент и бязь (в зависимости от метода стерилизации), разрешенные для этой цели в установленном порядке. Упаковочные материалы используют однократно.

· При паровом методе, кроме того, используют стерилизационные коробки с фильтрами.

· При воздушном и инфракрасном методах допускается стерилизация инструментов в неупакованном виде (в открытых лотках), после чего их сразу используют по назначению.

· Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде, осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала, согласно инструкции по его применению.

· Стерилизация изделий в неупакованном виде допускается только при децентрализованной системе обработки в следующих случаях:

при стерилизации ИМН растворами химических средств;

при стерилизации металлических инструментов термическими методами (гласперленовый, инфракрасный, воздушный, паровой) в портативных стерилизаторах.

· Все изделия, простерилизованные в неупакованном виде, целесообразно сразу использовать по назначению. Запрещается перенос их из кабинета в кабинет.

· При необходимости, инструменты, простерилизованные в неупакованном виде одним из термических методов, после окончания стерилизации допускается хранить в разрешенных к применению в установленном порядке бактерицидных (оснащенных ультрафиолетовыми лампами) камерах в течение срока, указанного в руководстве по эксплуатации оборудования, а в случае отсутствия таких камер – на стерильном столе не более 6 часов.

· Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках, допускается извлекать для использования из стерилизационных коробок не более чем в течение 6 часов после их вскрытия.

· Бактерицидные камеры, оснащенные ультрафиолетовыми лампами, допускается применять только с целью хранения инструментов для снижения риска их вторичной контаминации микроорганизмами в соответствии с инструкцией по эксплуатации. Категорически запрещается применять такое оборудование с целью дезинфекции или стерилизации изделий.

· При стерилизации изделий в неупакованном виде воздушным методом не допускается хранение простерилизованных изделий в воздушном стерилизаторе и их использование на следующий день после стерилизации.

· При стерилизации химическим методом с применением растворов химических средств отмытые стерильной водой простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку с фильтром, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

· Все манипуляции по накрытию стерильного стола проводить в стерильном халате, маске и перчатках, с использованием стерильных простыней. Обязательно делать отметку о дате и времени накрытия стерильного стола. Стерильный стол накрывают на 6 часов. Не использованные в течение этого срока материалы и инструменты со стерильного стола направлять на повторную стерилизацию.

· Не допускается использование простерилизованных изделий медицинского назначения с истекшим после стерилизации сроком хранения.

· Учет стерилизации изделий медицинского назначения ведут в журнале по учетной статистической форме.

Для госпитальных штаммов возбудителей ВБИ характерна

⇐ ПредыдущаяСтр 14 из 22

а) высокая чувствительность к антибактериальным средствам

б) устойчивость к антибактериальным средствам!

в) чувствительность к ультрафиолетовому облучению

г) устойчивость к УФО!

Выберите два правильных ответа:

Манипуляции и процедуры, потенциально опасные для развития ВБИ у пациента

а) инъекции!

б) измерение АД

в) флюорография

г) гемодиализ!

Выберите один правильный ответ:

Уничтожение вероятно накопленных микроорганизмов при отсутствии видимого источника инфекции – это дезинфекция

а) профилактическая!

б) очаговая

в) текущая

г) заключительная

Выберите один правильный ответ:

При проведении предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

а) удаляют различные загрязнения!

б) уничтожают вегетативные формы микроорганизмов

в) уничтожают вегетативные и споровые формы микробов

г) обезвреживают источник инфекции

Выберите один правильный ответ:

Дезинфекционные мероприятия после удаления источника заболевания из очага – это дезинфекция

а) заключительная!

б) текущая

в) очаговая

г) профилактическая

Выберите один правильный ответ:

Приобретение устойчивости к антибиотикам характерно для возбудителей

а) условно-патогенных

б) патогенных

в) госпитальных!

г) грибов

Выберите один правильный ответ:

Химический метод дезинфекции – это

а) использование бактериальных фильтров

б) стирка, мытье, проветривание

в) использование УФО, высокой температуры, пара

г) использование дезсредств!

Выберите один правильный ответ:

В пакеты красного цвета собирают медицинские отходы класса

а) А

б) Б

в) В

г) Г

Выберите один правильный ответ:

Генеральная уборка в кабинете, где проводятся инвазивные процедуры, должна проводится 1 раз в

а) 3 дня

б) 7 дней!

в) 10 дней

г) 1 месяц

Выберите один правильный ответ:

Срок сохранения стерильности изделий зависит от

а) метода стерилизации!

б) упаковки!

в) вида изделия медицинского назначения

г) характера манипуляции

Выберите один правильный ответ:

Контроль качества предстерилизационной очистки определяет наличие

а) остатков крови!

б) остатков лекарственных препаратов

в) остатков механических загрязнений

г) микроорганизмов

Выберите один правильный ответ:

При попадании биологических материалов на слизистую оболочку ротовой полости, её необходимо обработать раствором перманганата калия

а) 0,05%!

б) 0,5%

в) 0,01%

г) 0,1%

Выберите один правильный ответ:

Инкубационный период гепатита В

а) 20 дней

б) 30 дней

в) 180 дней!

г) 1 год

Выберите один правильный ответ:

Режим воздушной стерилизации

а) 120о С, 45 минут

б) 132о С, 20 минут

в) 160о С, 150 минут!

г) 180о С, 30 минут

Выберите один правильный ответ:

Концентрация дезсредства для обработки использованных изделий медицинского назначения зависит от

а) степени загрязненности объекта

б) характера выполненной манипуляции!

в) срока годности дезраствора

г) физико-химических свойств раствора

Выберите один правильный ответ:

Моющий раствор «Биолот» при ручной предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения используют

а) однократно!

б) трехкратно

в) шестикратно

г) восьмикратно

Выберите один правильный ответ:

Антисептика – это мероприятия, направленные на

а) предупреждение попадания микробов в рану

б) уничтожение или уменьшение количества микробов в ране или организме в целом!

в) уничтожение патогенных и условно-патогенных микробов на эпидемиологически значимых объектах больничной среды:

г) уничтожение всех микробов и их спор на изделиях медицинского назначения

Выберите один правильный ответ:

На емкости с дезраствором не указывают

а) концентрацию

б) название раствора

в) дату приготовления или начало использования

г) объект дезинфекции!

Выберите один правильный ответ:

Основной целью проведения мероприятий по инфекционной безопасности и инфекционному контролю в ЛПУ является профилактика

а) любых ВБИ!

б) гепатита

в) заболеваний, передающихся через кровь

г) ВИЧ-инфекции

Выберите один правильный ответ:

Мероприятия, направленные на уничтожение или уменьшение количества микроорганизмов в ране или в организме в целом, называется

а) асептикой

б) дезинфекцией

в) антисептикой!

г) стерилизацией

Выберите один правильный ответ:

Разъемные медицинские изделия

а) подвергают дезинфекции в собранном виде

б) подвергают дезинфекции в разобранном виде!

в) подвергают дезинфекции в любом виде

г) дезинфекции не подвергают

Выберите один правильный ответ:

Свойство препаратов, обладающих способностью убивать споры

а) бактерицидное

б) спороцидное!

в) вирулицидное

г) фунгицидное

Выберите один правильный ответ:

Сбор и утилизация медицинских отходов ЛПУ проводится с целью

а) обезвреживания источника инфекции

б) разрыва путей передачи!

в) повышения невосприимчивости персонала

г) выявления источника инфекции

Выберите один правильный ответ:

Текущая уборка палатных помещений ЛПУ в целях профилактики внутрибольничных инфекций проводится

а) 1 раз в сутки

б) 2 раза в сутки!

в) 1 раз в 3 суток

г) 1 раз в 7 дней

Выберите один правильный ответ:

Срок сохранения стерильности изделий в комбинированных пакетах, запаянных на термосварочном аппарате, составляет

а) 3 суток

б) 20 суток

в) 12 мес.!

г) 4-6 часов

Выберите один правильный ответ:

Для контроля предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

а) ставят азопирамовую пробу!

б) используют термовременные индикаторы

в) используют биотесты

г) делают смывы с различных поверхностей

Выберите один правильный ответ:

Аварийная аптечка индивидуальной защиты при работе с биологическим материалом не содержит

а) 70% спирт

б) протаргол!

в) 5% спиртовую настойку йода

г) навеску перманганата калия

Выберите один правильный ответ:

После стерилизации изделий медицинского назначения в растворах, их необходимо ополоснуть

а) водопроводной водой

б) дистиллированной водой

в) стерильной водой!

г) антисептиком

Выберите один правильный ответ:

Моющий раствор «Прогресс» при проведении ручной предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения используют

а) однократно

б) трехкратно

в) шестикратно!

г) двухкратно

Выберите один правильный ответ:

Многоразовые изделия медицинского назначения после инвазивных манипуляций подвергаются

а) только предстерилизационной очистке

б) только дезинфекции

в) только стерилизации

г) дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации!

Выберите один правильный ответ:

Асептика-это мероприятия, направленные на

а) предупреждение попадания микробов в рану!

б) уничтожение или уменьшение количества микробов в ране или организме в целом

в) уничтожение патогенных и условно-патогенных микробов на эпидемиологически значимых объектах больничной среды

г) уничтожение всех микробов и их спор

Выберите один правильный ответ:

Мероприятия по удалению патогенных микроорганизмов и их переносчиков после удаления источника инфекционного заболевания из основного очага — это дезинфекция

а) профилактическая

б) очаговая

в) текущая

г) заключительная !

Выберите один правильный ответ:

Комплекс мероприятий, направленных на уничтожение членистоногих переносчиков возбудителей инфекционных заболеваний, называется

а) дезинфекцией

б) дезинсекцией!

в) дератизацией

г) антисептикой

Выберите один правильный ответ:

Для совмещения в один этап дезинфекции и предстерилизационной очистки можно использовать дезинфицирующие средства, обладающие

а) только дезинфицирующим действием

б) и дезинфицирующим , и моющим действием!

в) и дезинфицирующим, и стерилизующим действием

г) и дезинфицирующим, и дезодорирующим действием

Выберите один правильный ответ:

Мероприятия, направленные на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, называются

а) асептикой!

б) антисептикой

в) дезинфекцией

г) стерилизацией

Выберите один правильный ответ:

Для генеральной уборки предпочтительно использовать дезинфектанты, обладающие свойствами

а) дезинфицирующими

б) дезинфицирующими и моющими!

в) дезинфицирующими и дезодорирующими

г) дезинфицирующими и спороцидными

Выберите один правильный ответ:

Рекомендуемые страницы:

Сроки хранения стерильности в зависимости от упаковки.

Паровой метод:

Срок хранения стерильности изделий простерилизованных в герметичной упаковке в перманганате, бумаге мешочной, пропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

А в любой негерметичной упаковке и стерилизационной коробке без фильтра – 3 суток.

Краткость использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной и бумаги крепированной – до 2-х раз, крафт-бумаги – до 3-х раз ( с учётом целостности).

Воздушный метод:

Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на «стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

Срок хранения изделий простерилизованных в крафт-бумаге – 3 е суток. Кратность использования её до 3-х раз.

Срок хранения изделий, простерилизованных и герметично упаковочных в бумагу упаковочную высокопрочную, бумагу крепированную – 20 суток. Кратность использования бумаги мешочной влагопрочной, бумаги крепированной до 2-х раз, бумаги упаковочной высокопрочной – до 3-х раз.

Стерилизация растворами химических веществ.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную коробку выложенную стерильной простыней на срок не более 3-х суток.

Стерилизацию изделий проводят с целью уничтожения микроорганизмов всех видов в том числе споровых форм.

Стерилизации подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью контактирующие с кровью в организме пациента или вводимой в него инъекционными препаратами, а также изделия, которые в процессе эксплуатации контактируют со слизистой оболочкой и могут вызвать её повреждение.

КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ В ЛПУ

Для контроля стерилизационного процесса используют физический, химический и биологический методы контроля.

Физический метод:

• предусматривает контроль параметров работы стерили­зационного оборудования (таймерами, датчиками температу­ры, давления и относительной влажности и др.);

• проводится оператором, обслуживающим стерилизационное оборудование;

• должен проводиться ежедневно при каждом цикле сте­рилизации;

• позволяет оперативно выявить и устранить отклонения в работе стерилизационного оборудования.

Недостаток метода: он оценивает действие параметров внутри камеры аппарата, а не внутри стерилизуемых упако­вок и поэтому должен использоваться в комплексе с други­ми методами контроля.

Химический метод:

• необходим для оперативного контроля одного или не­скольких действующих параметров стерилизационного цикла;

• должен проводиться ежедневно при каждом цикле сте­рилизации;

проводится с использованием химических индикаторов (см. классификацию химических индикаторов). Принцип действия химических индикаторов основан на изменении аг­регатного состояния индикаторного вещества или (и) цвета индикаторной краски при действии определенных парамет­ров стерилизации, строго специфичных для каждого типа ин­дикаторов в зависимости ОТ метода и режима стерилизации по принципу размещения индикаторов на стерилизуемых объектах различают два типа химических индикаторов: на­ружные и внутренние.

Наружные индикаторы (ленты, наклейки) кренятся лип­ким слоем на поверхности используемых упаковок (бумага, металл, стекло и т. д.) и впоследствии удаляются. Наружными индикаторами могут являться также некоторые упаковочные материалы (например, бумажно-пластиковые мешки, рулоны), содержащие; химический индикатор на своей поверхности.

Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковки со стерилизуемыми материалами независимо от ее вида (бумажный или пластиковый пакет, металлический контейнер и др.). К ним 011ккятся различные виды бумажных индикаторных по­лосок, содержащие на своей поверхности индикаторную краску.

В зависимости от количества контролируемых парамет­ров стерилизационного цикла различают несколько классов химических индикаторов. Чем выше класс индикатора, тем больше параметров стерилизационного цикла он контроли­рует и тем выше вероятность получения стерильных матери­алов при их использовании.

Класс 1. Индикаторы процесса стерилизации — наружные ин­дикаторы, предназначенные для использования на индивидуальных упаковках со стерилизуемыми ма­териалами. Результаты расшифровки позволяют сделать заключение о том, что данная упаковка с ин­струментом (материалом) прошла стерилизацион­ную обработку выбранным методом и таким обралом отличить ее от необработанной.

Класс 2. Индикаторы одной переменной — предназначены для оперативного контроля действия ОДНОГО из факто­ров стерилизации (например, достижение опреде­ленной температуры, концентрации активно дейст­вующего вещества в химическом растворе, концент­рации газа и т. д.).

Класс 3. Мультипараметрические индикаторы — предназна­чены для оценки действия двух и более факторов стерилизационного цикла. Нанесенная на их по­верхность индикаторная краска изменяет свой цвет только при одновременном действии нескольких па­раметров (например, температуры и времени при воздушной стерилизации; температуры, экспозициии насыщенного пара при паровом методе стерилизации; концентрации газа и относительной влажности при газовом методе и т. д.). Класс 4. Интеграторы — химические индикаторы, которые являются аналогом биологических индикаторов. Они разработаны для использования в любых режимах парового или воздушного метода стерилизации и контролируют одновременное действие всех парамет­ров выбранного метода. Принцип действия интеграто­ров основан на том, что скорость плавления химичес­кого вещества, содержащегося в них, индентична скоро­сти гибели споровых форм бактерий, которые являются тестовыми и используются в традиционных биоло­гических индикаторах. Их преимущество: расши­фровка результатов проводится после окончания цикла стерилизации и позволяет сделать заключе­ние о стерильности (нестерильности) материалов.

Все виды химических индикаторов должны применяться в соответствии с инструкциями, утвержденными МЗ Респуб­лики Беларусь.

Биологический метод:

• основан на гибели споровых форм тест-культур, специ­фичных для каждого из используемых методов стерилизации;

• предназначен для оценки состояния стерильности изде­лий из материалов;

• подтверждает эффективность выбранного режима стери­лизации.

Биологические индикаторы могут быть изготовлены в ла­бораторных условиях. К применению допускаются также ин­дикаторы импортного производства в соответствии с инст­рукциями но их применению, утвержденными N43 Республи­ки Беларусь.

Упаковка материалов. Применяемые упаковочные ма­териалы для любого метода стерилизации должны обладать следующими характеристиками:

• не влиять на качество стерилизуемых объектов;

• быть проницаемыми для стерилизующих агентов;

•обеспечивать герметичность вплоть до вскрытия упаковки;

• легко вскрываться без нарушения асептики содержимого.

Различают следующие виды упаковочного материала, ко­торые могут применяться отдельно или в сочетании друг с другом: бумага, металл, стекло, ткань, пластмасса.

Упаковочные материалы делятся на две категории: одно­разового использования (бумага, бумажно-пластиковые ма­териалы) и многоразового использования (контейнеры).

Максимальные сроки сохранения стерильности объектов в зависимости от вида упаковки

  • •Общая медицинская микробиология
  • •Общая медицинская микробиология
  • •Список сокращений
  • •Этапы развития микробиологии
  • •Особенности микроорганизмов
  • •Систематика бактерий
  • •4. Смешанный подход.
  • •Отличия прокариотов и эукариротов
  • •Таксоны, применяемые в бактериологии:
  • •Подвидовые таксоны:
  • •Клон (греч. Klon — росток) — генетически однородная чистая культура микроорганизмов, полученная из одной материнской клетки.
  • •Номенклатура бактерий
  • •Морфология бактерий
  • •Мелкие и средние длиной 2–5 мкм, толщиной 0,4–0,8 мкм; — энтеробактерии;
  • •Длинные палочки длиной до 10 мкм, толщиной 0,5–2 мкм — бациллы;
  • •Бактерии — не образуют спор; необходимо иметь в виду, что термин «бактерия» часто используют для обозначения всех микроорганизмов-прокариот;
  • •Бациллы — спорообразующие аэробы; диаметр эндоспоры обычно не превышает ширины клетки;
  • •Клостридии — спорообразующие анаэробы; диаметр споры больше поперечника вегетативной клетки, в связи с этим клетка напоминает веретено или теннисную ракетку.
  • •Структура бактериальной клетки
  • •Обязательными органеллами бактериальной клетки являются нуклеоид, цпм, мезосомы, цп, рибосомы.
  • •Политрихи — много жгутиков:
  • •Клеточная стенка (кс)
  • •Формы бактерий с дефектом кс
  • •Запасные вещества прокариот
  • •7.12. Эндоспоры
  • •Терморезистентность эндоспор обусловлена:
  • •Практически полным отсутствием свободной воды;
  • •Большим содержанием кальциевой соли дипиколиновой кислоты, которая не встречается у вегетативных клеток;
  • •Особым строением белка;
  • •Стадии спорообразования (споруляции):
  • •Стадии прорастания споры:
  • •Систематическое положение спирохет
  • •Морфология спирохет.
  • •Отличительные признаки патогенных спирохет
  • •Характеристика трепонематозов
  • •Боррелии
  • •Фиксированные препараты окрашивают по Романовскому-Гимзе или фуксином. Боррелии при окраске по Романовскому-Гимзе —фиолетовые, фуксином — розовые (рис. 45б).
  • •Лептоспиры
  • •Актиномицеты
  • •Систематическое положение актиномицетов
  • •5) Актиномикоз цнс.
  • •Риккетсии
  • •Риккетсии названы в честь американского микробиолога х. Риккетса, открывшего возбудителя одного из риккетсиозов — пятнистой лихорадки скалистых гор и погибшего от этой инфекции (1909).
  • •Систематическое положение риккетсий
  • •Характеристика риккетсиозов
  • •Хламидии
  • •Систематическое положение хламидий
  • •Хламидии — мелкие коккобактерии, диаметром 250-300 нм, имеющие маленький геном — кольцевую днк, кодирующую синтез 500 белков.
  • •Хламидии сохраняют жизнеспособность во внешней среде при низких температурах, быстро погибают при воздействии высоких температур, при действии дезинфектантов.
  • •Тропны к цилиндрическому эпителию;
  • •Дифференциация родов семейства Chlamydiaceae
  • •Роль хламидий в патологии
  • •Микоплазмы
  • •Систематическое положение микоплазм
  • •Отличия микоплазм от других прокариот:
  • •Малый размер генома, наименьший у прокариотов (1/16 генома e. Coli, 1/10 генома риккетсий);
  • •Роль микоплазм в патологии
  • •Сравнительная характеристика спирохет, актиномицетов, риккетсий, хламидий, микоплазм
  • •Обмен веществ и энергии (метаболизм) у прокариотов
  • •Химическая структура и питательные потребности бактерий
  • •Питание микроорганизмов
  • •Конструктивный метаболизм
  • •Пути получения энергии у прокариотов
  • •Классификация бактерий по особенностям энергетического метаболизма
  • •Сравнительная эффективность различных способов получения энергии у гетеротрофов
  • •Энергетический метаболизм
  • •Классификация бактерий по отношению к кислороду воздуха
  • •Метаболическое направление эволюции микроорганизмов
  • •Рост и размножение микроорганизмов Рост микроорганизмов
  • •Размножение микроорганизмов
  • •Способы размножения микроорганизмов
  • •II. Бесполые способы размножения.
  • •Покоящиеся формы микроорганизмов
  • •Противомиробные мероприятия
  • •Стерилизация
  • •Резистентность эндоспор и вегетативных клеток
  • •Способы стерилизации
  • •Наиболее часто используемые режимы стерилизации паром под давлением
  • •Режимы стерилизации сухим жаром
  • •Стерилизации инструментов и изделий медицинского назначения
  • •Факторы, определяющие эффективность стерилизации
  • •Виды контроля стерилизации в лпу
  • •Максимальные сроки сохранения стерильности объектов в зависимости от вида упаковки
  • •Дезинфекция
  • •Способы дезинфекции
  • •Спектр антимикробной активности веществ, входящих в состав дезинфектантов
  • •Корреляция классификации медицинских инструментов с уровнем дезинфекции
  • •Характеристика дезинфектантов
  • •Условия химической инактивации некоторых микроорганизмов
  • •Антисептика
  • •Способы антисептики
  • •Препараты нпо «БелАсептика», зарегистрированные мз рб и рекомендованные к применению
  • •Асептика
  • •Методы асептики
  • •Противомикробный режим
  • •Генетика бактерий
  • •Наследственность бактерий
  • •Генетический аппарат бактерий
  • •Нуклеоид
  • •3. Эволюция организмов происходит благодаря мутациям и генетическим рекомбинациям.
  • •Плазмиды
  • •Мобильные (мигрирующие) генетические элементы
  • •Сравнительная характеристика внехромосомных факторов наследственности
  • •Характеристики геномов некоторых бактерий
  • •Изменчивость бактерий
  • •Сравнительная характеристика изменчивости
  • •Мутации
  • •Классификации мутаций
  • •I. По происхождению.
  • •II. По проявлению мутации в фенотипе.
  • •1. Проявленные (доминантные).
  • •III. По направленности действия.
  • •IV. По фенотипическим последствиям для мутировавшей клетки.
  • •V. По характеру изменений в первичной структуре днк.
  • •I. Репарации.
  • •Генетические рекомбинации
  • •Фенотипическая изменчивость
  • •Практическое использование изменчивости
  • •Медицинская биотехнология и генная инженерия
  • •Геномика
  • •Учение об инфекционном процессе Инфекционные заболевания в патологии человека
  • •Инфекционный процесс и факторы, влияющие на него
  • •III. Условия (факторы) внешней среды, в которых взаимодействуют макро- и микроорганизм.
  • •Классификации инфекционных заболеваний
  • •Кровяные инфекции: вирусные гепатиты в и с;
  • •Респираторные инфекции: дифтерия, корь, коклюш, менингококковая инфекция, скарлатина;
  • •Инфекции наружных покровов: сифилис, гонорея, хламидиоз;
  • •»Вертикальные» инфекции: вирусный гепатит в, вич–инфекция;
  • •Характеристика механизмов и путей передачи инфекции
  • •Генерализованная (общая) — микроорганизм распространяется (диссеминирует) из ворот инфекции лимфогенным, гематогенным путем или по отросткам нейронов:
  • •Спорадическая заболеваемость — отдельные случаи одной нозологической формы, эпидемически не связанные между собой;
  • •Эпидемии: лавинообразное нарастание заболеваемости, случаи эпидемически связаны между собой;
  • •Пандемии: эпидемия, охватывающая несколько стран, целый континент, всю человеческую популяцию;
  • •Периоды инфекционного заболевания
  • •Характеристика периодов инфекционного заболевания
  • •Патогенность
  • •Потенциальность — может реализоваться при определенных условиях:
  • •Вирулентность
  • •Определение вирулентности Качественное определение вирулентности проводится прямым (биопроба) или косвенным (наличие ферментов вирулентности) способами.
  • •Факторы патогенности
  • •Колонизацию — размножение бактерий на поверхности клеток макроорганизма;
  • •Инвазию — проникновение бактерий через слизистые и соединительнотканные барьеры макроорганизма в подлежащие ткани;
  • •Переход возбудителя к другому хозяину.
  • •У Грам- бактерий — пили I и общего типов;
  • •Капсульные полисахариды клебсиелл, поверхностные белки, липополисахариды;
  • •Гемагглютинины вирусов.
  • •Фибринолизины (стрептокиназа и стафилококкокиназа) растворяют сгусток фибрина, ограничивающий местный очаг воспаления, что позволяет бактериям быстро распространяться в органы и ткани;
  • •Ферменты агрессии микрорганизмов:
  • •ДнКаза — деполимеризует днк;
  • •6. Другие:
  • •Характеристика бактериальных токсинов
  • •Сравнительная характеристика бактериальных экзотоксинов и эндотоксинов
  • •Активация комплемента по альтернативному пути;
  • •Поликлональная стимуляция и пролиферация в–лимфоцитов, синтез Ig m;
  • •Системы секреции факторов патогенности у Грам- бактерий
  • •Генетический контроль факторов патогенности
  • •Синдром системного воспалительного ответа
  • •Химиотерапия инфекционных заболеваний Этапы становления химиотерапии
  • •Классификация антимикробных средств
  • •Группы химиопрепаратов
  • •1. По антимикробному спектру действия:
  • •2. По происхождению:
  • •3. По типу действия:
  • •4. По направленности действия:
  • •5. По химическому строению:
  • •Классификация и спектр активности пенициллинов
  • •Классификация и спектр активности цефалоспоринов
  • •Классификация и спектр активности аминогликозидов
  • •Классификация макролидов
  • •Классификация фторхинолонов
  • •Классификация антибиотиков по механизму действия
  • •Антибиотикорезистентность, ассоциированная с модификацией мишени
  • •5. Снижение физиологической роли мишени и формирование метаболического «шунта».
  • •7. Модификация структуры молекулы антибиотика, приводящая к утрате биологической активности.
  • •Наиболее частые механизмы резистентности бактерий к антибиотикам
  • •Побочные действия антибиотиков
  • •5. Влияние на иммунный ответ.
  • •6. Возникновение антибиотикорезистентных форм микроорганизмов:
  • •Операции и состояния, при которых целесообразна антибиотикопрофилактика
  • •Бактерии, проявляющие резистентность к антибиотикам
  • •Экологическая микробиология Экология микроорганизмов
  • •Время возникновения живых существ
  • •Экологическое направление эволюции микроорганизмов
  • •Экологические понятия
  • •Концепция микробной доминанты
  • •Роль микроорганизмов в круговороте веществ в природе
  • •Микробиологические аспекты охраны окружающей среды
  • •Экологические связи
  • •Экологические факторы абиотической среды
  • •Действие на микроорганизмы физических факторов внешней среды
  • •Действие на микроорганизмы химических факторов внешней среды
  • •Экологические среды микроорганизмов
  • •Бактериологические показатели, рекомендуемые для санитарно-гигиенической оценки воздуха лпу
  • •Эумикробиоз и дисбиоз
  • •Наличие/отсутствие микроорганизмов в биотопах тела человека
  • •Биотопы, имеющие постоянную микрофлору
  • •Значение нормальной микрофлоры
  • •Эубиоз различных биотопов организма человека
  • •Показатели, характеризующие эубиоз кишечника
  • •Показатели, характеризующие степень чистоты влагалища
  • •Дисбиоз (дисмикробиоз)
  • •Причины дисбиоза:
  • •Классификации дисбиозов:
  • •Дисбиоз полости рта
  • •Дисбиоз кишечника
  • •Принципы коррекции дисбиоза
  • •1. Устранение причины, вызвавшей дисбиоз.
  • •Основные группы пробиотиков на основе компонентов микроорганизмных клеток или метаболитов
  • •Бактериофаги, используемые для коррекции дисбиоза кишечника
  • •Профилактика дисбиоза
  • •Методы изучения нормальной микрофлоры
  • •Литература
  • •Оглавление


Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *